Кроме указанных инструментов, нужно иметь стерилизатор электрический или простой, в зависимости от условий; шприц Жанэ или резиновую спринцовку (грушу) для промывания игл после взятия крови; посуду для воды (ведра, тазы); обогревательный прибор для стерилизатора – примус, газовую плиту и т. п., если нет электричества. Из медикаментов необходимы: спиртовой раствор йода, вата, бинты, 3 %-й раствор фенола, 70°-й этиловый. спирт (можно гидролизный). При взятии проб нужно следить, чтобы капли крови не попадали во внешнюю среду. Струю крови следует направлять по стенке пробирки, не допуская вспенивания. Пробирка должна быть теплой, что особенно важно зимой. Не следует набирать кровь каплями; такая кровь, как правило, гемолизируется и для исследования непригодна.
После взятия крови и закрепления этикетки пробирку ставят в водяную баню при температуре 30...35 °С на 30 мин. Особенно это важно в прохладное и холодное время года. При извлечении из водяной бани пробирки просматривают для определения характера свертывания крови и отделения сыворотки. Если сгусток плотно прилип к стенке пробирки, его отделяют от стекла, делая обводку тонкой стеклянной палочкой или проволокой. Затем пробирки с кровью помещают в прохладное место для отстаивания сыворотки. После каждой обводки проволоку обтирают ватой и прокаливают на спиртовке. Если в пробирке обнаружен гемолиз, то проба бракуется. Особенно быстро происходит гемолиз в крови свиней, поэтому пробирки с их кровью необходимо особенно тщательно оберегать от действия неблагоприятных факторов (высоких температур, встряхивания и т. п.).
На бирках лучше всего писать простым карандашом. Запись делают в виде простой дроби, в числителе которой помещают порядковый номер, а в знаменателе – кличку (бирку) животного.
В зависимости от вида животных, условий содержания, времени года, типа помещений, где содержатся животные, массовые взятия проб организуются по-разному.
Взятие проб крови у крупного рогатого скота. Кровь берут из яремной вены, желательно утром до кормления животных. Волосы на месте взятия крови выстригают, операционное поле протирают 3 %-м раствором фенола. У каждого животного кровь берут стерильной иглой.
Если на ферме есть раскол или станок, то лучше кровь брать там. Это более удобно, и после работы легче обезвредить место взятия крови. Однако при такой системе работы, даже при привязном содержании животных, требуются большие затраты труда. Поэтому в практике у животных, содержащихся на привязи, кровь чаще берут непосредственно в стойлах. Вену пережимают с помощью жгута. Чтобы капли крови не попадали на пол и в кормушку, резиновую трубку, надетую на конец иглы, перед введением иглы в вену опускают в пробирку.
Молодняк при беспривязном содержании, а также буйных животных при отсутствии станков и расколов для взятия крови фиксируют у столбов. Столб должен быть крепким и гладким. Иногда пользуются коновязями.
При фиксации вокруг столба исключается возможность травмы людей и животных, один человек свободно справляется с животным и, фиксируя, пережимает вену.
Для облегчения работы по взятию проб крови у крупного рогатого скота предложены различные приспособления, однако в производственной практике широкого применения они пока не нашли, так как имеют существенные недостатки. Пробы крови у крупного рогатого скота в комплексах берут в специальных расколах, заканчивающихся фиксационным станком.
Взятие проб крови у овец. Овец для взятия крови прогоняют через раскол, рядом с которым выкапывают траншею глубиной около 1 м (до пояса человека). Ветеринарный специалист находится в этой траншее, и к нему по очереди подводят овец. Яремная вена у овец легко пережимается пальцем. Иногда вместо траншеи делают специальный стол высотой 60–90 см. Овец через раскол загоняют на стол и фиксируют, ветеринарный врач стоит рядом и берет кровь.
Взятие проб крови у свиней. Для взятия проб крови у свиней используют разные методы. Фиксируют животных за верхнюю челюсть с помощью веревочной или кожаной петли. Кровь берут из сосудов уха или хвоста путем прокола или надреза сосуда. В практике чаще всего кровь берут из хвоста, причем в некоторых случаях вместо прокола сосуда отрубают кончик хвоста секачом (ножом для вскрытий) или рассекают его вдоль ножницами. В последнее время нашел применение новый способ взятия крови из хвоста. У фиксированного обычным способом животного левой рукой берут хвост и поворачивают его с таким расчетом, чтобы вентральная поверхность хвоста была обращена направо или кверху. На границе средней и нижней трети хвоста строго посередине остроконечным скальпелем делают прокол всех мягких тканей до позвонка. При этом рассекают кожу, подкожную клетчатку, мышцы и вентральную артерию поперек. После прокола тканей придают хвосту естественное положение и приподнимают нижнюю его треть для того, чтобы операционная рана была открыта. Кровь выделяется равномерной струей. После взятия нужного количества крови место прокола смазывают 5 %-м раствором йода и хвост опускают. В результате сокращения мышц хвоста происходит закрытие просвета прокола и кровотечение за 3–5 мин полностью прекращается.
Свиней при этом способе взятия крови можно фиксировать в расколе, в результате чего значительно повышается производительность труда.
Можно брать кровь и из орбитального венозного сплетения. Этот способ применяется при работе с лабораторными животными, молодняком и свиньями. Он прост, удобен, дает возможность получить нужное количество крови при минимальной затрате времени.
Глубокая лицевая вена в области периорбиты формирует венозный синус, который легко доступен для введения иглы. Для взятия крови можно использовать иглы № 2055, 2079, 2540, 2260, Ананьева или Каспера.
Зафиксированному животному иглу вводят в область наружного (латерального) угла глаза по направлению к противоположной ветви нижней челюсти (угол 40–45°) до упора в кость орбиты. Скос иглы должен быть направлен к орбите (в противоположную сторону от глазного яблока). Затем иглу слегка оттягивают обратно, и кровь обычно идет сразу. Если кровь не пошла, иглу слегка смещают влево или вправо.
Можно вводить иглу и со стороны медиального угла глаза. При этом укол иглы делают через третье веко. Направляют иглу к основанию противоположного уха (к носовой перегородке) сверху вниз. Иглу вводят до упора, затем слегка оттягивают.
После извлечения иглы иногда может появиться несколько капель крови, которые следует убрать тампоном.
При необходимости через сутки взятие крови можно повторить. При таком взятии крови почти никогда не бывает гемолиза. У животных никаких осложнений не наблюдается.
При необходимости получения большого количества крови (10 мл и больше) ее берут непосредственно из полои вены. При этом животное фиксируют за верхнюю челюсть обычным способом и применяют длинную иглу (10–15 см) и шприц. Иглу вводят в вену со стороны подгрудка.
Взятие проб крови у птиц. Кровь у птиц берут при массовых их обработках. Подробно этот вопрос рассматривается при описании болезней птиц.(???)
Взятие проб крови у лошадей. Кровь у лошадей берут из яремной вены. Обычно вену пережимают пальцем, а голову поднимают. При массовых исследованиях для пережатия вены можно пользоваться резиновым жгутом. При работе с табунными лошадьми обязательно строят расколы или станки, так как эти животные могут нанести людям и себе травмы.
Консервирование сыворотки крови. При невозможности сразу отправить кровь в лабораторию сыворотку сливают. В теплое время года сыворотку для лучшей сохранности необходимо законсервировать. Для этого можно использовать 5 %-й раствор фенола на изотоническом растворе натрия хлорида из расчета 1 мл раствора на 9 мл сыворотки (две капли на 1 мл). Можно консервировать сыворотку борной кислотой по 0,05–0,07 г на одну пробирку с пробой (на кончике скальпеля).
2. Методы утилизации трупов животных, павших от инфекционных болезней. Утильзаводы, крематории, скотомогильники, сжигание в ямах( простая с гредой, крестообразная, двойная). Очень важно своевременно и правильно провести утилизацию трупа — это один из главных моментов в профилактике инфекционных болезней.Неубранный труп является распространителем возбудителей инфекционных болезней. Если животное пало от заразных болезней, труп утилизируют в биотермической яме (в ветеринарной литературе такие ямы называют по автору — Бекаари) или сжиганием.Применявшийся прежде способ уничтожения трупов зарыванием на скотомогильнике в настоящее время не рекомендуется. Лучший способ уборки трупов — это переработка их на утильзаводе. По договоренности владелец может получить с завода корма животного происхождения (технические жиры, мясо-костную муку ит. п.). Доставка трупа на завод осуществляется транспортом завода по предварительной заявке владельца. Место сжигания трупа определяет ветеринарный работник по согласованию с представителем пожарной охраны. Обычно этим местом является старый скотомогильник. Яму для сжигания трупа выкапывают длиной 2,80—2,90 м и глубиной 70—90 см. Землю укладывают вдоль краев ямы в виде гряды. Яму заполняют до уровня земли сухими дровами, уложенными в клетку. По возможности для этой цели используют старые шины, солярку. Когда труп полностью сгорел, оставшийся пепел и обуглившиеся остатки трупа зарывают в той же яме. Доставку трупа на место сжигания производят в обитой железом повозке, после чего повозку, а также место, где лежал труп, дезинфицируют 5-процентным раствором едкого натра.
3. Злокачественный отек:этиология, патогенез, постановка диагноза. Дифференциация от сибирской язвы(лат. -- Oedema malignum, septicaemia gangrenosa; англ. -- Malignant oedema, gas gangrena, big head; раневой газовый отек, газовая гангрена) -- остро протекающая неконтагиозная раневая токсикоинфекция животных и человека, вызываемая группой патогенных клостридии и характеризующаяся воспалительными отеками с образованием газов, некрозом пораженных тканей и интоксикацией организма.
Возбудители болезниЗлокачественный отек -- болезнь полимикробной этиологии. В развитии инфекционного процесса основную роль играют следующие виды бактерий из рода клостридий: С. septicum, С. novyi, С. perfringens, С. chauvoei (имеет значение только у овец), С. hystoliticum и С. sordellii. Из пораженных тканей чаще выделяют С. perfringens (60... 80%, чаще тип А), реже -- С. novyi (20...30%, в основном тип А), С. septicum (10...20 %), С. hystoliticum (2...20 %), реже -- другие представители патогенных клостридий. Болезнь вызывают как каждая из этих клостридий, так и их ассоциации. Другие микроорганизмы самостоятельно болезнь не вызывают, но обеспечивают более благоприятные условия для активного размножения возбудителей
Эпизоотология
К злокачественному отеку восприимчивы овцы, лошади, мулы, ослы, крупный рогатый скот, свиньи, олени. Маловосприимчи-вы и заболевают редко человек, плотоядные, птицы, собаки и кошки. Зарегистрированы случаи заболевания других видов животных. Наиболее восприимчивы лошади и овцы.
Источником возбудителя инфекции служат больные животные, которые выделяют возбудитель болезни во внешнюю среду с фекалиями и истечениями.
Ворота инфекции -- раны и повреждения. Болезнь отмечается в виде спорадических случаев после ранений, оперативных вмешательств, кастрации, стрижки, обрезки хвостов и т. д., проведенных без соблюдения правил асептики и антисептики. Возникновению болезни способствуют тяжелые роды, задержание последа, выпадение матки, внесение инфекции при оказании акушерской помощи и т. д.
5. Патогенез
Различают инфекционную и токсическую стадии развития болезни. В инфекционной стадии происходят усиленное размножение микроорганизмов в очаге поражения (образование отека и газовая инфильтрация пораженных тканей) и быстрое распространение их по всему организму с кровью в атональном состоянии. Токсическая стадия развивается в результате действия токсинов, распространяющихся в тканях, вызывающих гибель организма от токсемии. Поражения чаще наблюдаются на участках тела с массивной мускулатурой -- круп, бедро, лопатка, спина, голова, шея, голень.
Споры возбудителей болезни, попав в поврежденную ткань, при наличии анаэробных условий прорастают, интенсивно размножаются, выделяя токсины. Микробы, токсины и продукты распада тканей всасываются в кровь, разносятся по всему организму, осложняя патологический процесс. В результате интоксикации поражаются ЦНС, дыхательный центр, нарушается сердечная деятельность и наступает смерть от интоксикации.
6. Течение и клиническое проявление
Длительность инкубационного периода зависит от возбудителя и локализации патологического процесса и составляет от 12 ч до нескольких дней. Течение болезни острое, особенно у овец и лошадей. Злокачественный отек протекает от 1 до 3...4, иногда до 7 дней. Летальность высокая.
Клиническое проявление и течение болезни зависят от вида животных, вида и токсичности возбудителя или их ассоциации, характера и локализации поражений. Различают послераневой злокачественный отек, послеродовой злокачественный отек, злокачественный отек сычуга ягнят, злокачественный отек головы и др.
Общие признаки: сильное угнетение, отказ от корма, учащение пульса, затрудненное дыхание, синюшность слизистых оболочек, температура тела чаще всего повышена (но может быть и в пределах нормы) на 1...2 °С, перед смертью понижается. При отсутствии лечения животные погибают в течение нескольких дней.
Чаще всего встречается эмфизематозная форма болезни, которая характеризуется стремительно развивающейся газовой инфильтрацией пораженных тканей, быстрым увеличением объема пораженной области. При пальпации отмечается крепитация, при надавливании из раны выделяется экссудат с пузырьками газа. При этой форме болезни возбудителем чаще служит С. perfringens. Отечно-токсическая форма характеризуется быстро развивающимся отеком пораженных тканей. Отек быстро увеличивается и распространяется на окружающие ткани. Некротические процессы в мышцах и газообразование отсутствуют или слабо выражены. Очень быстро проявляются признаки общей интоксикации организма. Из патологического материала выделяют С. novyi и С. septicum. Тканерас-плавляющая форма отличается резко выраженными явлениями расплавления ткани с обнажением костей. Отечность и газообразование выражены слабо. Эта форма злокачественного отека встречается очень редко, вызывается С. histolyticum.
Чаще встречается смешанная форма.
7. Патологоанатомические признаки
Они зависят от места локализации очага инфекции. Трупы в большинстве вздуты и быстро разлагаются. Наиболее характерные изменения локализуются в пораженных органах или участках тела. Соединительная ткань в области отека пропитана желтой и красноватой жидкостью, иногда гемолизированнои, содержащей пузырьки газа, издающей прогорклый или гнилостный запах.
Вид пораженных мышц и количество газа в соединительной ткани зависят от вида возбудителя. При гибели животных в результате заражения С. novyi обнаруживается студенистый бесцветный или кремового оттенка отек. Поражения при инфицировании С. histolyticum весьма характерны: распад всех тканей от кожи до костей, кровянистый, с частицами некро-тизированных тканей экссудат. Мышцы окрашены в темно-коричневый цвет, легко разрываются, мягкие, сочные, плохо режутся. Если воспалительный процесс вызван С. septicum, мышцы красного цвета; если С. perfringens -- мышцы как будто вареные, зеленоватого оттенка, с большим количеством пузырьков газа; если С. novyi или С. sordellii -- мышцы студенистые, отек гелеобразный. При смешанной инфекции с наличием гнилостных аэробов или анаэробов пораженная ткань имеет серый, бурый и синеватый цвет. Кровь в сосудах трупа свернувшаяся, в грудной и брюшной полостях содержится кровянистый экссудат. Изменения внутренних органов нетипичны.
8. Диагностика и дифференциальная диагностика
Материалом для исследования служат тканевый экссудат, кусочки пораженных мышц, паренхиматозные органы, а от трупов овец, кроме того, часть сычуга и тонкого отдела кишечника с содержимым (для одновременного исследования на брадзот и энтеротоксемию).
Диагноз устанавливают на основании анамнестических данных, клинических и патологоанатомических показателей и результатов лабораторных исследований.
При исследовании материала проводят микроскопию мазков, бактериологическое исследование, биопробу на лабораторных животных (морских свинках) и реакцию нейтрализации со специфическими сыворотками для определения вида возбудителей.
Диагноз считается установленным:
1) при выделении культуры с характерными свойствами, положительной биопробе с типичной картиной и выделением чистой культуры;
2) при положительной биопробе из исходного патматериала с характерной картиной патологических изменений и выделением чистой культуры.
При дифференциальной диагностике злокачественного отека необходимо исключить карбункулярную форму сибирской язвы и эмфизематозный карбункул крупного рогатого скота.
9. Иммунитет, специфическая профилактика
Иммунитет при злокачественном отеке антитоксический. В связи с тем что злокачественный отек -- это болезнь полимикробной этиологии и возникает спорадически, средства его активной профилактики в плановом порядке не используют. Однако полианатоксин против клостридиозов овец и поливалентная вакцина против брадзота, энтеротоксемии, злокачественного отека и дизентерии ягнят могут быть успешно использованы.
10. Профилактика
Меры профилактики при злокачественном отеке животных сводятся в основном к соблюдению строгой асептики при операциях и своевременному лечению ран. Для профилактики родильного злокачественного отека необходимо соблюдение санитарно-гигиенических условий при отелах. При тяжелых родах с повреждением слизистых оболочек и прилегающих к ним тканей родовых путей рекомендуется орошение их дезинфицирующими растворами. Большое значение имеет соблюдение санитарно-гигиенических условий при родах и оказании акушерской помощи. В стационарно неблагополучных зонах рекомендуется перед массовыми обработками поголовья, родами, связанными с возможностью травмирования, вводить животным поливалентную антитоксическую сыворотку в сочетании с антибиотиками.
11. Лечение
Поскольку болезненный процесс развивается исключительно быстро, успех лечения в основном зависит от того, насколько своевременно будет оказана помощь. Больное животное изолируют, обеспечивают хорошим кормлением и обильным питьем.
Делают глубокие продольные разрезы кожи, подкожной клетчатки и пораженных мышц в области отека, вскрывают карманы раны и удаляют некротизированные участки тканей. После хирургической обработки обильно орошают рану растворами антисептиков.
Основа лечения -- применив антибиотиков и сульфаниламидов местно и парентерально в больших дозах. При злокачественном отеке матки наряду с антибиотикотерапией рекомендуется внутриматочное введение растворов антибактериальных и дезинфицирующих веществ. В ряде случаев помогает антитоксическая сыворотка против анаэробной энтеротоксемии и анаэробной дизентерии ягнят (при наличии возбудителя С. perfringens).
12. Меры борьбы
При появлении в хозяйстве случаев заболевания злокачественным отеком ограничений на хозяйство не накладывают, но больных животных изолируют и лечат. Помещения, в которых находились больные животные, очищают и дезинфицируют 3%-ным горячим раствором гидроксида натрия, 5%-ным раствором формалина, 3...5%-ным раствором серно-карболовой смеси или взвесью хлорной извести с содержанием не менее 5 % активного хлора. Инфицированный навоз сжигают.
Трупы павших животных направляют на утилизационный завод или сжигают на месте. Убой на мясо больных и подозрительных по заболеванию животных и снятие шкур запрещаются.
